5-Biopsia renal

Report
BIOPSIA PERCUTÁNEA RENAL
Jorge Arturo Barreras Espinoza
Juan Francisco Esquer Cota
Jorge Luis Hernández Rodríguez
Daniela Mercedes Montalvo Bojórquez
Paulina Quintero Mendivil
Ana Karen Sánchez Levario
CONTENIDO
• Técnica e indicaciones de la biopsia renal.
• Procesamiento histológico e
Interpretación.
Ana Karen Sánchez Levario
INTRODUCCIÓN
INTRODUCCIÓN
• La técnica de la biopsia renal percutánea (BRP)
se introdujó a la clínica a principios de los años
50´s.
Exploración
invasiva
Método de estudio
insustituible:
 Indicaiones
de forma
 Clasificación
anatomo-clínica
individualizada
 Profundización
en los mecanismos
 Depende del cuadro
etiopatogénicos
clínico en protocolos
 Análisis científicos
 Balance:
riego-beneficios
 Información
diagnostica,
pronostica
 Eficacia de tratamiento
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
TÉCNICA
• Técnica de elección en la mayoría de los casos.
Técnica quirúrgica
abierta
Biopsia transvenosa por
vía yugular
Se utiliza poco, útil en pacientes
con mal estado general, riesgo
de sangrado.
Catéter especial que llega al
riñón, por vena renal penetra
parénquima y toma muestra,
útil en pacientes con trastornos
de la coagulación.
Vía laparoscópica
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PREPARACIÓN DEL
PACIENTE
• Principales complicaciones: HEMORRAGIAS.
Se debe de :
a) Comprobar que la coagulación es normal.
b) Determinar el grupo sanguíneo y prever la posibilidad de
una trasfusión sanguínea.
c) Comprobar que la presión arterial está controlada.
1) Premedicación (atropina + diazepam)
2) Paciente decúbito prono sobre
almohada doblada a la altura del
epigastrio y ambos hipocondrios
3) Desinfección local
4) Anestesia por planos con xilocaína
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LOCALIZACIÓN DEL RIÑÓN
Línea a seguir
• Preferentemente izquierda.
• Se puede hacer:
 Forma indirecta: placa tomográfica
(raquis, última costilla, cresta ilíaca )
Ecográfico: situación del polo renal y
profundidad con respecto a la piel.
TAC.
Polo inferior
izquierdo
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TIPOS DE AGUJAS
• Actualmente se realiza con pistolas especiales
de biopsia.
De forma automática introducen la aguja
en el parénquima renal, extraen en el
interior de la aguja.
Este sistema es más preciso y seguro que
los antiguos sistemas manuales.
Calibre de las agujas oscilan
entre 18G (muy fina) y 14G (la
más gruesa) correlación entre
grosor y eficacia (número de
glomérulos extraídos) *16G
suficiente.
Pistola automática de biopsia
Marcas para profundidad
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Jorge Arturo Barreras Espinoza
INDICACIONES
INDICACIONES
Síndrome
Enfermedades
Otras indicaciones:
nefrótico
sistémicas
Proteinuria
Hematuria
Insuficiencia crónica ligera
Trasplante
Insuficiencia
Renal
renal
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CONTRAINDICACIONES
• Contraindicación
absoluta.
Coagulopatía
• Contraindicaciones
relativas.
– Hipertensión
arterial
– Riñón único
– Poliquistosis
– Hidronefrosis
– Defectos
anatómicos renales
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COMPLICACIONES
• En general:
– 24 hrs reposo
– Hematuria transitoria
• 1 de 10 hematuria
• 1 de 100 transfusiones
• 1 de 1000 cirugía o tx
con embolizantes.
• 1 de 1000 mortalidad
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Daniela Mercedes Montalvo Bojórquez
PROCESAMIENTO HISTOLÓGICO E
INTERPRETACIÓN
BIOPSIA RENAL: PRINCIPIOS GENERALES SOBRE SU
ALMACENAMIENTO Y TRANSPORTE
• Primer control con lupa: cortical con glomérulos
visibles
• Envuelve en gasa con sol. Salina a 4°C y
trasladar inmediatamente en hielo: lab de
anatomía patológica
• Cuando se traslada a otro hospital:
Microscopía electrónica:
Solución de sacarosa al 6.8% en tampón
fosfato a pH 7.2 o en fijador
recomendado
Inmunofluorescencia:
Sol. De Michels+N-etilmaleimida y
Realizar
fulfato amónico
antes el
muestreo
para ME
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MUESTREO DE LA BIOPSIA RENAL
Dos cilindros:
• 2 fragmentos 0.5mm
longitud y se fijan
para ME, el resto se
congela para
inmunofluorescencia
• Cilindro se fija para
MO
Un cilindro:
No se reconoce la cortical:
• •2
Muestreo
con
lupapara
extremos del
cilindro
ME
• •Toma
ME: ciega
extremo
para IFcortical
c/ sección
Poco
material:
inmediata
criostato
más
distalen(mín.
2y
Dividir
porcomo
igual
para
Cuñas biópsicas
obtenidas
coloración
biopsia
glomérulos)
microlumbotomía
IF y por
ME,
sacrificando el
intraoperatoria:
tienen suficiente
cortical:si no
más
muestra
análisis
histológico
• 1)IF:Congelar
la
sig.
Porción
(mín.
toma puede ser ciego
se ven glomérulos
2 reservando
glomérulos)
un mínimo para
estudio óptico
• MO: material
2) Indicar rápidamente al
restante(6-8
nefrólogo, nueva biopsia
glomérulos)
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Daniela Mercedes Montalvo Bojórquez
PROCESAMIENTO TÉCNICO DE LAS
MUESTRAS
CONGELACIÓN DEL MATERIAL PARA
INMUNOFLUORESCENCIA
Consenso general: colocar muestra en medio de
homogeneización de tipo OCT con inmersión en
isopentano -50° hasta -70°C
*Se puede congelar directamente por inmersión en
nitrógeno líquido pero el tejido se endurece demasiado
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FIJACIÓN DEL MATERIAL PARA MICROSCOPÍA
ÓPTICA Y ELECTRÓNICA
Para MO
• Tamaño: 1mm o menos
• Fijado en glutaraldehído al 2% en tampón fosfato o
cacodilato mínimo 2-4h
• Refijación en tetróxido de osmio
• Se incluye en parafina
Para ME
• Sol. Tamponada de formaldehído al 4% a pH 7.4 máx 24h
(asegura DNA para análisis posteriores)
• Se incluye en epoxirresinas
Sospecha de depósito de sustancias hidrosolubles (glucógeno,
cristales de urato u oxalato):
Fijar pequeño fragmento en etanol al 96%
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Paulina Quintero Mendivil
CORTE Y COLORACIÓN DE LA BIOPSIA
PROCESO
• Seccionado en
criostato
• Secciones de parafina
3 y 4 micras
• Valoración inicial de
la tinción con
hematoxilina- eosina
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HEMATOXILINA- EOSINA
• Presencia de lesiones
elementales de:
Glomerulopatías primarias
Glomerulopatías
secundarias
Nefropatías intersticiales
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DESCRIPCIÓN ÓPTICA DE LA BIOPSIA
• Número de glomérulos
Tamaño
Celularidad
• Tipo o tipos de lesiones
predominantes
Leve
• Difuso o local
Moderada
• Afectación global o
segmentaria
Grave
• Porcentaje de glomérulos
esclerosados, fibrosantes,
semilunas
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• Lesiones tubulares
(necrosis, dilatación…)
grado de atrofia
• Edema, inflamación y
fibrosis
• Lesiones vasculares
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• Valoración del aparato
yuxtaglomerular
(hipertrofia)
• REALIZAR OTRAS
COLORACIONES
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OTRAS TINCIONES
• Masson- Goldner
• PAS (membranas
basales)
Necrosis fibrinoide
• Glomérulo- esclerosis
• Rojo Sirio- ácido
pícrico
• Engrosamientos,
reduplicaciones y
espinas
• Sustancia mesangial
• Técnica de la plata
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Juan Francisco Esquer C.
ESTUDIOS DE LA BIOPSIA RENAL
MÉTODO DE
INMUNOFLUORESCENCIA
• Corresponde a un grupo de técnicas de inmunotinción que
permiten demostrar una variedad de antígenos presentes en
las células o tejidos utilizando anticuerpos marcados.
• Estas técnicas se basan en la capacidad de los anticuerpos
de unirse específicamente a los correspondientes antígenos.
• Esta reacción es visible sólo si el anticuerpo está marcado
con una sustancia que absorbe o emite luz
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
MÉTODO DE
INMUNOFLUORESCENCIA
• La inmunofluorescencia directa, es decir con anticuerpos
conjugados con fluoresceína, se aplica frecuentemente en el
diagnóstico morfológico de la GN.
• Permite definir la naturaleza de los inmunocomlejos
depositados, así como su distribución, cantidad dentro del
glomérulo, vasos y estructuras restantes.
• Anticuerpos para IgG, IgM, IgA, IgD, IgE, fibrinógeno,
albumina, entre otros.
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
DEPÓSITOS SEGÚN SU
LOCALIZACIÓN
A.
B.
C.
D.
Depósitos Capilares
Depósitos mesangiales
Depósitos en membranas basales: Siguen un patrón lineal.
Depósitos vasculares: Arcos, granulares, lineales y difusos.
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INMUNOFLUORESCENCIA
La GNM se caracteriza,
inmunopatológicament, por
depósitos de IgG,
granulares en las paredes
de capilares.
imunofluorescencia con
anticuerpos anti-IgG
marcados con fluoresceina,
X400)
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
INMUNOFLUORESCENCIA
Positividad granular para C3
demostrada por
inmunofluorescencia. Se observan
múltiples gránulos de tamaño
diverso en las paredes capilares
(parietales). La foto corresponde
al de una GN membranosa.
(Inmunofluorescencia para C3,
Acs. anti-C3 humana marcados
con fluoresceina).
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
INMUNOFLUORESCENCIA
Positividad para IgA en áreas
mesangiales en un caso de
nefropatía IgA. Observe que no se
dibujan las paredes capilares, sólo
se ve una positividad que dibuja
áreas irregulares que corresponden
al mesangio. (Inmunofluorescencia
para IgA, Acs. anti-IgA humana
marcados con fluoresceina,
microscopio de fluorescencia,
X400).
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
INMUNOFLUORESCENCIA
Las flechas rojas indican algunas
paredes capilares con
inmunotinción lineal; la flecha
azul clara señala un nódulo
diabético. (Inmunofluorescencia
directa para IgG con anticuerpos
anti-IgG humana marcados con
fluoresceína, X400).
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
MÉTODOS
INMUNOHISTOQUIMICOS
• Se basa en la utilización de un anticuerpo específico,
previamente marcado mediante un enlace químico con una
enzima que puede transformar un sustrato en visible, sin
afectar la capacidad del anticuerpo para formar un
complejo con el antígeno.
• Enzimas mas utilizadas, son la inmunoperoxidasa y la
unmunofosfatasa.
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
MÉTODOS
INMUNOHISTOQUIMICOS
• Posibilidad de practicarse en parafina
• Preparaciones mas duraderas
• Posibilidad de identificar células inflamatorias y su
inmunofenotipo.
• Posibilidad de estudiar dos antígenos diferentes en una
misma sección histológica.
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
MÉTODOS
INMUNOHISTOQUIMICOS
Linfoma de Burkitt, t(8;14)
. Imagen a pequeño
aumento de la
proliferación tumoral.
Destaca la presencia de un
patrón en "cielo
estrellado" de la lesión.
Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica Panamericana. 2da edición, 2006.
Jorge Luis Hernández Rodríguez
ARTÍCULO DE REVISIÓN
BIOPSIA RENAL PERCUTÁNEA ECODIRIGIDA
DRS. SILVA M, LEYTON R, CABEZÓN A, VALENZUELA A, ORTIZ F, ESCALONA A, MUÑOZ C.
Hospital Clínico FUSAT. Revista médica de urología. Rancagua, 2009
•
RESUMEN
• Biopsias renales percutáneas desde septiembre
1999 a agosto de 2003.
• Se realizan 35 biopsias.
• Se presentó una complicación grave: hematoma
perirrenal severo.
Biopsia renal percutánea ecodirigida. DRS. SILVA M, LEYTON R, CABEZÓN A, VALENZUELA A, ORTIZ F, ESCALONA A, MUÑOZ C.
Hospital Clínico FUSAT. Revista médica de urología. Rancagua, 2009.
• Solamente una paciente requirió de una
hospitalización mayor.
• Indicaciones más frecuentes:
– Proteinuria
– Insuficiencia renal crónica
– Lupus eritematoso sistémico
Biopsia renal percutánea ecodirigida. DRS. SILVA M, LEYTON R, CABEZÓN A, VALENZUELA A, ORTIZ F, ESCALONA A, MUÑOZ C.
Hospital Clínico FUSAT. Revista médica de urología. Rancagua, 2009.
• Diagnóstico histopatológicos
Biopsia renal percutánea ecodirigida. DRS. SILVA M, LEYTON R, CABEZÓN A, VALENZUELA A, ORTIZ F, ESCALONA A, MUÑOZ C.
Hospital Clínico FUSAT. Revista médica de urología. Rancagua, 2009.
• Las complicaciones resultantes son
generalmente menores.
– Hematuria microscópica
– Hematuria macroscópica ocurre en el 5-15%.
• Los pacientes examinados con TAC abdominal,
tienen hematoma perirrenal.
• La complicación más severa es la laceración de
un vaso renal mayor o la formación de una
fístula arteriovenosa.
– Hipertensión arterial y la nefroangioesclerosis
Biopsia renal percutánea ecodirigida. DRS. SILVA M, LEYTON R, CABEZÓN A, VALENZUELA A, ORTIZ F, ESCALONA A, MUÑOZ C.
Hospital Clínico FUSAT. Revista médica de urología. Rancagua, 2009.
• Mortalidad es poco frecuente
• Es un procedimiento seguro, sencillo y rápido.
Biopsia renal percutánea ecodirigida. DRS. SILVA M, LEYTON R, CABEZÓN A, VALENZUELA A, ORTIZ F, ESCALONA A, MUÑOZ C.
Hospital Clínico FUSAT. Revista médica de urología. Rancagua, 2009.
BIBLIOGRAFÍA
• Nefrología clínica. P. Aljama. Editorial medica
Panamericana. 2da edición, 2006.
• Biopsia renal percutánea ecodirigida. DRS.
SILVA M, LEYTON R, CABEZÓN A,
VALENZUELA A, ORTIZ F, ESCALONA A,
MUÑOZ C. Hospital Clínico FUSAT. Revista
médica de urología. Rancagua, 2009.

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